Зборник радова

езом нанесе садржај одговарајуће колиметријске епрувете. Након инкубирања 24 h на 37С израсле колоније се преливају гвожђе(Ш)- хлоридом. Уколико дође до појаве тамне зелене боје потврђено је присуство Proteus sp. Број се одређује из Swaroop-ове таблице. 2.2.5.6. Утврђивање присуства и одређивање броја Streptococcus faecalis у узорку Садржај колиметријских епрувета засејава се на ДТА у Петри шоље издељене на осам једнаких делова. У сваку комору се у виду кривудаве линије езом нанесе садржај одговарајуће колиметријске епрувете. Након инкубнрања 24 h на 37С израсле колоније се преливају 3% водоник пероксидом (каталаза тест). Уколико дође до појаве мехурића и промене боје колонија, потврђено је присуство Streptococcus faecalis у узорку, а број се одређује уз помоћ Swaroop-ове таблице. 2.2.5.7. Одређивање броја сулфиторедукујућих клостридија у 100 мл узорка 3 мл чистог узорка у епрувети инактивише се 15 минута на 80С у воденом купатилу. Затим седода2o мл ССА подлоге и инкубира 48 h на 37С. Након инкубације пребројавају се израсле црне колоније. Број сулфиторедукујућих клостридија у 100 мл узорка (X) израчунава се по формули: X = Кх 100/ V где је К- број израслих колонија, a V- запремина узорка 2.2.5.9. Утврђивање присуства неких физиолошких група бактерија у узорку а) Утврђивање присуства амилолитичких бактерија у узорку Стакленим штапићем се утрљава 1 мл узорка у подлогу скробни агар. Након инкубације 7 дана на 25С, колоније израсле на подлози преливају се Луголовим раствором. Позитивна реакција - зона просветљења око колонија. б) Утврђивање присуства протеолитичких бактерија у узорку У подлогу за одређивање броја протеолитичких бактерија стакленим штапићем се утрљава 1 мл узорка. Након инкубације 5 дана на 25С, колоније израслих бактерија на желатинозној подлози збришу се комадом вате натопљене реагенсом HgClz и површина подлоге се прелије истим реагенсом. Места где су биле колоније протеолитичких бактерија остају просветљена док остала површина подлоге добија млечну боју. ц) Утврђивање присуства целулолитичких бактерија у узорку На ЛА подлогу се стакленим штапићем утрљава 1 мл узорка. Затим се тако засејана подлога прекрије стерилним филтер папиром навлаженим у течној хранљивој подлози ЛБ. Након инкубирања у трајању од 7 дана на 25С филтер папир се скида и испира дестилованом водом. На местима где је дошло до хидролизе целулозе примећују се оштећења на папиру. д) Утврђивање присуства липолитичких бактерија у узорку